2 PrioCHECK™ Porc. Salmonella Ab 2.0 Strip Kit Notice d'Utilisation
Solution de lavage
La solution de lavage (composant 4) doit être diluée (100x) dans de l'eau
déminéralisée ou de l'eau distillée.
La quantité est suffisante pour un volume final de 6 litres. Pour faire un test
avec une plaque : préparer 500 mL (ajouter 5 mL de solution de lavage
(100x) à 495 mL d'eau déminéralisée ou distillée.
Stabilité de la solution de lavage : 1 semaine en étant stockée à 22±3°C.
Pre-dilution des échantillons (3x) dans une plaque fictive
1. Distribuer 50 µL de chaque échantillon de test dans les puits appropriés
de la plaque fictive (voir Tableau 1).
Remarque : les échantillons de test peuvent être ajoutés dans un puits
(test unique) ou dans deux puits adjacents (test en double) en fonction
de vos exigences expérimentales.
2. Distribuer 100 µL de solution tampon de dilution de travail dans
chaque puits contenant un échantillon, puis mélanger le contenu des
puits.
3. Agiter la ou les plaques fictives pendant 1 minute à 700 tr/min (1/min).
Remarque : Le mélange de l'échantillon avec le tampon de dilution est
essentiel pour le test.
Incubation des échantillons de contrôle et des échantillons de
test
1. Marquez chaque barrette (composant 1) de la plaque de test avec un
marqueur fin.
2. Distribuer 80 µL de solution tampon de dilution de travail dans les
puits d’échantillon de la plaque de test (voir Tableau 2).
3. Transférer 20 µL de chaque puits de la plaque fictive au puits respectif
de la plaque de test.
4. Distribuer 90 µL de solution tampon de dilution de travail dans les
puits de contrôle de la plaque de test (voir Tableau 2)
5. Verser 10 µL du contrôle négatif (composant 5) dans les puits A1 et B1.
6. Verser 10 µL du contrôle positif (composant 7) dans les puits C1 et D1.
7. (Facultatif) Verser 10 µL du contrôle de validation (composant 6) dans
les puits E1 et F1.
8. Agiter la ou les plaques pendant 1 minute à 700 tr/min (1/min).
9. Incuber la/les plaque(s) de test pour 30±3 minutes à température
ambiante (22±3°C).
Incubation avec le conjugue
1. Vider la plaque et la laver 3 fois avec 300 µL de solution de lavage
diluée. Tapoter vigoureusement la plaque après le dernier cycle de
lavage.
2. Verser 100 µL de solution fonctionnelle du conjugué dans tous les puits.
3. Sceller la plaque de test avec le scellant pour plaques.
4. Incuber la/les plaque(s) de test pour 30±3 minutes à température
ambiante (22±3°C).
Incubation avec le substrat chromogène (TMB)
1. Vider la plaque de test à barrettes et la laver 3 fois avec 300 µL de
solution de lavage diluée. Tapoter vigoureusement la plaque après le
dernier cycle de lavage.
2. Verser 100 µL de substrat chromogène (TMB) (composant 8) dans tous
les puits.
3. Incuber la plaque pour 15±1 minutes à température ambiante (22±3°C).
4. Verser 100 µL de la solution d'arrêt (composant 9) dans tous les puits.
5. Mélanger le contenu des puits de la plaque.
Remarque : Commencer l'ajout de la solution d'arrêt 15 minutes après avoir
rempli le premier puits avec du substrat chromogène (TMB). Ajouter la
solution d'arrêt dans le même ordre et à la même vitesse que lors du
versement du substrat chromogène (TMB).
Lecture du test et calcul des résultats
1. Mesurer la densité optique (DO) des puits à 450 nm de préférence dans
les 15 minutes après l'arrêt de la formation de coloration.
2. Calculer la valeur DO450 moyenne du contrôle positif (puits C1 et D1).
3. Calculer la valeur DO450 moyenne du contrôle négatif (puits A1 et B1).
4. Calculer la valeur DO450 corrigée du contrôle positif, du contrôle de
validation (si utilisé) et de tous les échantillons en soustrayant la DO450
moyenne du contrôle négatif (puits A1 et B1).
5. Calculer le pourcentage de positivité (PP) de tous les contrôles et des
échantillons en appliquant la formule suivante.
La DO450 des échantillons est exprimée en pourcentage de positivité (PP) de la
DO450 du contrôle positif (PC) (puits C1 et D1) corrigée par la DO450 moyenne
du contrôle négatif (NC) (puits A1 et B1).
PP =DO450 de l'échantillon - DO450 moyenne du NC
DO450 de l'échantillon - DO450 moyenne du PC × 120- 16
Interprétation du résultat
Critères de validation
1. La DO450 moyenne de contrôle négatif (puits A1 et B1) doit être <0.4.
2. La DO450 moyenne du contrôle positif (non corrigé) devrait être >1.0.
3. Si le contrôle de validation était utilisé, le pourcentage de positivité du
contrôle de validation devrait être ≥ 40.
Au cas où ces critères ne seraient pas atteints, il faut rejeter les résultats de
cette plaque de test.
Remarque : Si la DO450 du contrôle positif (non corrigée) est inférieure à
1.000, la solution de substrat chromogène (TMB) était peut-être trop froide.
Il faut alors chauffer la solution à 22±3°C ou l'incuber jusqu'à 30 minutes.
Interprétation du pourcentage de positivité.
PP = <40% Négatif
Absence d'anticorps spécifiques de
Salmonella dans l'échantillon testé.
PP = ≥40% Positif
Présence d'anticorps spécifiques de
Salmonella dans l'échantillon testé.
Dans les programmes de contrôle des salmonelles plus avancés, le test peut
être utilisé avec un seuil différent (20% PP p. ex.). La stipulation de tels
seuils relève de la compétence des autorités/utilisateurs respectifs.
Plans de plaque recommandés
Les plans de plaque suivants permettent de transférer efficacement des
échantillons pré-dilués de la plaque fictive à la plaque de test (X - vide ;
S - échantillon ; P - contrôle positif ; N - contrôle négatif ; V - contrôle de
validation (facultatif)).
Tableau 1 Plan de plaque fictive
(1) Si vous utilisez le contrôle de validation, laissez les puits E1 et F1 vides.
Tableau 2 Plan de plaque de test
Références
1. Nielsen B, Baggesen D, Bager F, Haugegaard J, Lind P (1995). Veterinary
Microbiology 47:205–218.
2. Van der Heijden HMF (2001). First International Ring Trial of ELISA’s
for Salmonella-antibody. Berl Münch Tierärztl Wschr 389–392.