Sartorius Stedim 16315 Directions For Use Manual

16306, 16307, 16315, 16316

Bedienungsanleitung

Glas-Vakuumfiltrationsgeräte

Directions for Use

Glass Vacuum Filter Holders

Mode d’emploi

des appareils de filtration sous vide en verre

Instrucciones para el uso

de los aparatos de filtración al vacío de vidrio

Istruzioni per l’uso

di apparecchi in vetro per filtrazione sottovuoto

80123-000-50

2 |

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| 3

1. Technische Daten

2. Lieferumfang

3. Reinigen und Pflegen des Filtrationsgerätes

4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes

5. Klarfiltration

6. Sterilfiltration

7. Mikrobiologische Untersuchungen

8. Analytische Bestimmungen

9. Empfehlenswertes Zubehör

10. Ersatzteile

Glas-Vakuumfiltrationsgeräte sind jeweils in zwei

Ausführungen erhältlich. Sie unterscheiden sich ledig-

lich durch die Filterunterstützung, die aus einem

PTFE-Ring besteht, der entweder eine Glasfritte oder

ein PTFE-beschichtetes Lochblech mit Stützsieb

enthält.

Die Filterunterstützung sind nur als Einheit

austauschbar.

Die Geräte mit Glasfritte werden wegen der besonders

gleichmäßigen Verteilung des Rückstandes auf der

Membranfilteroberfläche bevorzugt für die Rückstands-

analyse eingesetzt.

Die Geräte mit PTFE-beschichtetem Lochblech

werden hauptsächlich für die Klar- oder Sterilfiltration

(Litervolumina) eingesetzt.

Inhaltsverzeichnis

4 |

Material: Borosilicatglas 3.3 (DIN-ISO 3585)

Klammer: Eloxiertes Aluminium

Filterunterstützung: a) Glassinterfritte im PTFE-Ring,

mit Zentrierrand oben und Silikon-O-Ring unten oder

b) PTFE-beschichtetes Lochblech auf einem Stützsieb

im PTFE-Ring, mit Zentrierrand oben und Silikon-

O-Ring unten.

Geräte Nr. 16306* 16307*

16315** 16316**

Silikon-O-Ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm

Filterdurchmesser 25 mm 50 mm

(oder 24) (oder 47)

Vorfilterdurchmesser 20 mm 40 mm

Filtrationsfläche 3 cm2 12,5 cm2

Fassungsvermögen 30 ml 250 ml

Auslaufstutzen:

Außendurchmesser 12 mm 15 mm

Betriebsdruck nur Unterdruck nur Unterdruck

Sterilisation Autoklavieren bis 134° C,

Trockenhitze bis 180° C

Die zu verwendenden Bedingun-

gen sind von dem eingesetzten

Membranfilter abhängig.

** mit Glasfritte

** mit PTFE-Lochblech

1. Technische Daten

| 5

Entnehmen Sie das Gerät der Verpackung und

überprüfen Sie mit Hilfe der folgenden Liste die

Vollständigkeit der Lieferung:

Lieferumfang In Abb. 1

1 Deckel (nur 16307 und 16316) Nr. 1

1 Glasaufsatz Nr. 2

1 Klammer Nr. 3

1 Filterunterstützung mit Glasfritte

bzw. PTFE-Stützsieb u. PTFE-Lochblech Nr. 4

1 Silikon-O-Ring Nr. 5

1 Glasunterteil Nr. 6

2. Lieferumfang

Abb.1

6 |

Um eine lange Lebensdauer und Funktionstüchtig-

keit zu gewährleisten, ist es notwendig, das Gerät vor

dem ersten Gebrauch und nach jeder Benutzung zu

reinigen.

Gehen Sie so vor:

3.1 Zerlegen Sie das Gerät in seine Einzelteile (Abb.1).

3.2 Säubern Sie alle Teile mit warmen Wasser und

handelsüblichen Laborreinigungsmitteln (für Metall,

Glas, Kunststoff) und weichen Bürsten.

3.3 Spülen Sie die Teile mit heißen Wasser und danach

mit dest. Wasser ab.

3.4 Trocknen Sie die Teile im Preßluftstrom oder

an der Luft. Keine Verwendung von Tüchern,

wegen evtl. Faserabgabe.

4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes

und Einlegen des Membranfilters

Für den Aufbau eines Vakuumfiltrationsystems

benötigen Sie zusätzlich:

– 1 Stopfen (siehe Empfehlenswertes Zubehör)

– 1 Saugflasche (16672)

– 1 Vakuumquelle (z.B. 16612)

– Vakuumschlauch (16623)

– 1 Woulff’sche Flasche (16610) bzw. 1 Vacusart

(17804-M)

– 1 Pinzette für die Handhabung der Membranfilter

(Abb. 2).

Falls Sie große Mengen an Routineuntersuchungen

durchführen wollen, empfehlen wir Ihnen unsere

3- oder 6-fache Absaugvorrichtung mit der

entsprechen den Anzahl an Filtrationsgeräten und

Verbindungs stücken (siehe Empfehlenswertes Zubehör).

3. Reinigen und Pflegen des

Filtrations gerätes

| 7

4.1 Versehen Sie das Glasunterteil mit dem entsprechen den

Stopfen und setzen Sie es auf die Saugflasche

(Abb. 3).

4.2 Stellen Sie mit Hilfe des Vakuumschlauchs die

Verbindung zwischen Saugflasche und Vakuumquelle

(z.B. eine Wasserstrahlpumpe) her (Abb. 4).

Wird als Vakuumquelle eine elektrische Pumpe

einge setzt, so muß zum Schutz vor überschäu-

mendem Filtrat zwischen Saugflasche und Pumpe eine

Woulff’sche Flasche (Abb. 5) oder ein Vacusart (17804-

M) eingesetzt werden. Beim Einbau des Vacusart ist

darauf zu achten, daß das übergetretene Filtrat in die

Saugflasche zurück laufen kann und nicht im Schlauch

stehenbleibt.

4.3 Versehen Sie die Filterunterstützung auf der Unterseite

mit dem Silikon-O-Ring und auf der Ober seite mit der

Glasfritte bzw. dem Stützsieb und dem PTFE-beschich-

teten Lochblech. Legen Sie zunächst das Stütz sieb mit

der glatten Seite nach oben ein und drücken Sie das

PTFE-Lochblech (der Außenrand zeigt nach unten)

paßgenau in die dafür vorgesehene Vertiefung.

Dann legen Sie die Filterunterstützung auf das Glas-

unterteil (Abb. 6).

4.4 Nehmen Sie das Membranfilter mit Hilfe einer Pinzette

aus der Verpackung und legen Sie es zentrisch auf die

Filterunterstützung.

Bei Verwendung eines Vorfilters legen Sie dieses dann

anschließend zentrisch auf das Membranfilter.

Der Durchmesser des Vorfilters darf die unter

»1. Technische Daten« angegebenen Maße nicht

überschreiten. (Abb.7)

4.5 Setzen Sie den Glasaufsatz paßgenau auf das

Unterteil und verschließen Sie beide Teile mittels

der Verschlußklammer (Abb. 8).

8 |

5.1 Zusammensetzen des Filtrationsgerätes und Einlegen

des Membranfilters wie unter 4. beschrieben.

5.2 Füllen Sie die zu filtrierende Flüssigkeit

in den Glasaufsatz (Abb. 9) und schalten Sie die

Vakuumpumpe ein.

Hinweis:

Wenn Sie für die Filtration zusätzlich ein Vorfilter ver-

wenden, empfehlen wir erst die Vakuumpumpe einzu-

schalten und dann die zu filtrierende Flüssigkeit in den

Glasaufsatz zu füllen (sonst könnte das Vorfilter nach

oben schwimmen).

5.3 Die Filtration ist beendet, wenn keine Flüssigkeit mehr

auf dem Membranfilter steht. Nehmen Sie das Vakuum

vom Gerät, indem Sie bei einer Wasserstrahl pumpe

einfach den Schlauch von der Olive der Saugflasche

abziehen (Abb.10).

Bei Arbeiten mit Woulff’scher Flasche und Vakuum-

pumpe, schalten Sie die Pumpe ab und entspannen die

Woulff’sche Flasche (Abb.11).

5.4 Nun können Sie das Filtrationsgerät mit Stopfen von

der Saugflasche nehmen und das Filtrat umfüllen oder

auch direkt in der Saugflasche belassen.

6. Sterilfiltration

(nur mit PTFE-beschichteten Lochblech als Filterunter-

stützung möglich, nicht mit Glasfritte)

6.1 Zusammensetzen des Gerätes und Einlegen des

Membranfilters wie unter 4. beschrieben, jedoch ohne

Anschluß an eine Vakuumquelle bzw. Woulff’sche

Flasche.

5. Klarfiltration

| 9

Nylonfilter (Sartolon) sind grundsätzlich naß

einzulegen.

6.2 Versehen Sie die Olive der Saugflasche mit Hilfe eines

kurzen Vakuumschlauchs mit einem Vacusart (17804-

M) (Abb.12).

6.3 Verschließen Sie den Glasaufsatz mit dem Silikondeckel

und Watte oder mit Alu-Folie (Abb.13).

6.4 Das Gerät wird bei 121° C und 1 bar 30 Minu ten

autoklaviert (dies ist mit allen entsprechenden Sarto-

rius Stedim Biotech Membranfiltern durchzuführen,

ausgenom men Gelatine und Polyamid-Membranfilter).

Membranfilter aus Celluloseacetat 111.. und aus PTFE

118.. (ebenso die Glasfaserfilter 134..) können alter-

nativ im Filtrationsgerät mit Trockenhitze von 180° C

über

2 Stunden oder 160° C über 3 Stunden sterilisiert

werden (Filter trocken einlegen).

6.5 Nach dem Sterilisieren der Filtrationseinheit führen

Sie die Sterilfiltration wie eine Klarfiltration durch.

Beachten Sie sterile Bedingungen.

7. Mikrobiologische Untersuchungen

Für die mikrobiologische Untersuchung ist es erforder-

lich, das Filtrationsgerät mit eingelegtem

Filter zu sterilisieren (autoklavieren 121° C, 30 Minuten

oder Trockenhitze 180° C, 2 Std.). Anschließend führen

Sie die Filtration durch, entnehmen das Membranfilter

und inkubieren es auf entsprechenden Nährmedien.

8. Analytische Bestimmungen

Die Glasfiltrationsgeräte eignen sich in Verbindung

mit Membranfiltern sehr gut für z.B. gravimetrische

Bestimmungen, Partikeltests etc.

10 |

Filtrationsgerät Nr.

Artikelbezeichnung 16306* 16307*

16315** 16316**

Fluorelastomer-O-ring 00118 00124

Stopfen 17174 17175

Edelstahladapter mit Stopfen

für Edelstahlabsaug-

vorrichtung, 3fach und 6fach 16836 16837

Edelstahlabsaugvorrichtung,

3fach 16842 16842

Edelstahlabsaugvorrichtung,

6fach 16843 16843

Brutschrank 220 V, 50 Hz – 18113

** mit Glasfritte als Filterunterstützung

** Mit PTFE-Lochblech als Filterunterstützung

Das weitere Zubehör ist für alle Geräte gleich:

16672 Saugflasche, 2 l

16623 Gummi-Vakuumschlauch, 1 m

16611 Wasserstrahlpumpe

mit G3/4 Innengewinde

16612 Laborvakuumpumpe, 220 V, 50 Hz

16692 Vakuumpumpe, 220 V, 50 Hz

16610 Woulff’sche Flasche

17804-M Vacusart

16625 Edelstahlpinzette

9. Empfehlenswertes Zubehör

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16306, 16315:

6980115 Glasaufsatz, 30 ml

6980116 Glasunterteil, 25 mm

6980117 Silikon-O-Ring, 25 + 3 mm

6983008 Verschlußklammer

17148 PTFE-Ring mit Glasfritte und

Silikon-O-Ring (für 16306)

17149 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem

Stützsieb und Lochblech sowie

Silikon-O-Ring (für 16315)

16306

16315

10. Ersatzteile

(siehe Zeichnung)

12 |

16307, 16316:

6980119 Glasaufsatz, 250 ml

6980120 Glasunterteil, 50 mm

6980121 Deckel aus Silikonkautschuk

6980123 Silikon-O-Ring, 45 + 3 mm

6983006 Glasfritte

6983007 PTFE-Lochblech

6983009 Verschlußklammer

6983010 Stützsieb, PTFE-beschichtet

17146 PTFE-Ring mit Glasfritte und

Silikon-O-Ring (für 16307)

17147 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem

Stützsieb und Lochblech sowie

Silikon-O-Ring (für 16316)

16307

16316

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1. Specifications

2. Equipment Supplied

3. Cleaning and Care of the Filter Holder

4. How to Assemble the Filter Holder

5. Clarifying Filtration

6. Sterile Filtration

7. Microbiological Testing

8. Analytical Methods

9. Recommended Accessories

10. Spare Parts

Glass vacuum filter holders are available in two types

which differ only in the filter support, which is a PTFE

ring. This ring contains either a glass frit or a PTFE-

coated stainless steel screen and an underdrain screen.

The filter supports may only be changed as a unit.

Because of the particularly even distribution of parti-

culates of the membrane filter surface, filter supports

with glass frits are preferred for use in particulate

analysis.

Filter supports with a PTFE-coated screen are mainly

used for clarifying or sterile filtration of liter volumes.

Table of Contents

14 |

Materials: Borosilicate glass (3.3 DIN-ISO 3585)

Clamp: Anodized aluminum

Filter support: a) Sintered glass frit in a PTFE ring,

with a centering rim on top and silicone O-ring on

the bottom, or b) PTFE-coated stainless steel screen on

an underdrain screen in a PTFE ring, with a centering

rim on top and a silicone O-ring on the bottom.

Filter Holder No. 16306* 16307*

16315** 16316**

Silicone O-ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm

Filter diameter 25 mm 50 mm

(or 24) (or 47)

Prefilter diameter 20 mm 40 mm

Filtration area 3 cm2 12.5 cm2

Capacity 30 ml 250 ml

Connections:

Outer diameter of outlet 12 mm 15 mm

Operating pressure vacuum only vacuum only

Sterilization: Autoclave up to 134°C maxi-

mum, or use dry heat up to

180°C maximum depending

on the membrane filter used.

** with a glass frit

** with a PTFE-coated stainless steel screen

1. Specifications

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Remove the filter holder from the packaging and check

the list below to make sure you have all the necessary

parts:

Equipment supplied Shown in

Fig.1 as:

1 Lid (16307 and 16316 only) No. 1

1 Glass funnel No. 2

1 Clamp No. 3

1 Filter support with glass frit or PTFE-

coated support screen and PTFE

underdrain screen No. 4

1 Silicone O-ring No. 5

1 Glass base No. 6

2. Equipment supplied

Fig.1

16 |

To ensure long service life and proper functioning of

the filter holder, it must be cleaned before the first use

and after every filtration run.

Proceed as follows:

3.1 Completely disassemble the filter holder

as indicated in the list of parts (see Fig.1).

3.2 Use a soft brush, warm water, and a gentle, commer-

cially available laboratory detergent (for metal, glass

and plastics) to clean all parts.

3.3 Rinse all parts first with hot water, then with distilled

water.

3.4 Dry the parts with compressed air, or let them dripdry.

Do not use towels or cloth as they may leave lint on

the filter holder.

4. How to Assemble the Filter Holder and

Insert the Membrane Filter

To assemble the vacuum filtration system, you will

need in addition:

– 1 Stopper (see “Recommended Accessories”)

– 1 Suction flask (16672)

– 1 Vacuum source (e.g., 16612 or 16615)

– Vacuum hose (16623)

– 1 Woulff’s bottle (16610) or 1 Vacusart (17804-M)

– Pair of forceps for handling the membrane filter

(see Fig. 2).

For large numbers of routine tests, we recommend our

3-place or 6-place vacuum manifold along with the

corresponding number of filter holders and connectors.

(See “Recommended Accessories.”)

3. Cleaning and Care of the Filter Holder

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4.1 Place the appropriate stopper on the glass base and

insert it into the suction flask (see Fig. 3).

4.2 Using a vacuum hose, connect the suction flask and

vacuum source, such as a water jet pump (see Fig. 4).

If an electric pump is used as a vacuum source,

a Woulff’s bottle (see Fig. 5) or a Vacusart (17804-M)

must be connected between the suction flask and

the pump in order to prevent the filtrate from foa-

ming over and entering the pump. When installing the

Vacusart (17804-M) , be sure that any filtrate overflow

can return to the suction flask, and will not be

entrapped in the hose.

4.3 Press-fit the silicone O-ring on the underside of the

filter support and place the glass frit or support screen

and underdrain screen on top. To do so, place the

underdrain screen with the smooth side up in the filter

support and press on the PTFE-coated support screen

with the outside edge facing down so that it fits exactly

into the indentation.Then put the filter support on the

glass base (see Fig. 6).

4.4 Using forceps, remove the membrane filter from the

packaging and center it on the filter support.

If you need to use a prefilter, center it on the membra-

ne filter at this point. The diameter of the prefilter may

not exceed the dimensions listed in the “Specifications”

(see Fig. 7).

4.5 Set the glass funnel on top of the base so that it fits

exactly and clamp the two parts together (see Fig. 8).

18 |

5.1 Assemble the filter holder and insert the membrane

filter as described in section 4.

5.2 Pour the liquid to be filtered into the glass

funnel (see Fig. 9) and switch on the vacuum pump.

Important Note:

If you are additionally using a prefilter, switch the va-

cuum pump on before filling the funnel with the liquid

to be filtered. (Otherwise, the prefilter may float to the

top of the liquid.)

5.3 Filtration is completed when all the liquid has passed

through the membrane filter. Disconnect the vacuum

source from the filter holder by pulling the hose off

the hose nipple on the suction flask (if the water jet

pump is used; see Fig.10). If a Woulff’s bottle and a

vacuum pump have been used, switch off the pump

and release vacuum via the Woulff’s bottle (see Fig.11).

5.4 Now remove the filter holder and stopper from the

suction flask and transfer the filtrate to another con-

tainer or leave it in the suction flask.

6. Sterile Filtration

(This is possible only with the filter support and

PTFE-coated screen, and not the glass filter support.)

6.1 Assemble the filter holder and insert the mem brane

filter as described in section 4; however, do not con-

nect the filter holder to a vacuum source or a Woulff’s

bottle.

5. Clarifying Filtration

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Important Note:

Wet cellulose nitrate filters before placing them in wet

filter holders. If the filter holder is dry, cellulose nitrate

filter must also be dry. Always make it a point to wet

cellulose acetate filters and nylon filters (Sartolon)

before placing them in a filter holder.

6.2 Use a short length of vacuum tubing to attach

a Vacusart (17804-M) to the nipple of the suction

bottle (see Fig.12).

6.3 Close the glass funnel with either the silicone

lid and a piece of cotton or with aluminum foil

(see Fig.13).

6.4 Autoclave the filter holder at 121°C and 1 bar

(14.5 psi) for 30 minutes. (This may be done with all

Sartorius Stedim Biotech membrane filters except for

gelatin and polyamide filters.)

Cellulose nitrate membrane filters (111..) and PTFE

membrane filters (118..) as well as glass fiber filters

(134..) may be sterilized by dry heat for either 2 hours

at 180°C or for 3 hours at 160°C.

(Do not wet the filters before placing them

in filter holders.)

6.5 After sterilizing the assembled filtration unit, proceed

with the filtration run as with clarifying filtration.

Be sure to maintain sterile conditions.

7. Microbiological Testing

For microbiological testing, it is necessary to sterilize

the filter holder containing the membrane filter.

Either autoclave the filter at 121°C for 30 min., or use

dry heat at 180°C for 2 hours. After sterilizing, perform

the filtration run, then remove the membrane filter and

incubate it on the required culture medium|media.

8. Analytical Methods

Sartorius Stedim Biotech Vacuum Filter Holders made

of glass are especially suited for analysis, e.g.,

gravimetric determinations, particulate analysis, etc.

20 |

Filter Holder No.

Product Name 16306* 16307*

16315** 16316**

Fluoroelastomer O-ring 00118 00124

Stopper 17174 17175

Stainless steel adapter

with stopper for

stainless steel 3-place

and 6-place manifold 16836 16837

Stainless steel

3-place manifold 16842 16842

Stainless steel

6-place manifold 16843 16843

Incubator 220 V, 50 Hz – 18113

** with glass frit filter support

** with PTFE-coated screen for the filter support

These additional accessories can be used

with all filter holders:

16672 Suction flask, 2 l

16623 Rubber vacuum hose, 1m

16611 Water jet pump with G 3/4”

female thread

16612 Laboratory vacuum pump,

220 V, 50 Hz

16615 Laboratory vacuum pump,

110 V, 60 Hz

16692 Vacuum pump, 220 V, 50 Hz

16695 Vacuum pump, 110 V, 60 Hz

17804-M Vacusart

16625 Stainless steel forceps

9. Recommended Accessories

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