Sartorius Stedim 16315 Directions For Use Manual

Taper
Directions For Use Manual

Ce manuel convient également à

16306, 16307, 16315, 16316
Bedienungsanleitung
Glas-Vakuumfiltrationsgeräte
Directions for Use
Glass Vacuum Filter Holders
Mode d’emploi
des appareils de filtration sous vide en verre
Instrucciones para el uso
de los aparatos de filtración al vacío de vidrio
Istruzioni per l’uso
di apparecchi in vetro per filtrazione sottovuoto
80123-000-50
80123-000-50
2 |
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1. Technische Daten
2. Lieferumfang
3. Reinigen und Pflegen des Filtrationsgerätes
4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes
5. Klarfiltration
6. Sterilfiltration
7. Mikrobiologische Untersuchungen
8. Analytische Bestimmungen
9. Empfehlenswertes Zubehör
10. Ersatzteile
Glas-Vakuumfiltrationsgeräte sind jeweils in zwei
Ausführungen erhältlich. Sie unterscheiden sich ledig-
lich durch die Filterunterstützung, die aus einem
PTFE-Ring besteht, der entweder eine Glasfritte oder
ein PTFE-beschichtetes Lochblech mit Stützsieb
enthält.
Die Filterunterstützung sind nur als Einheit
austauschbar.
Die Geräte mit Glasfritte werden wegen der besonders
gleichmäßigen Verteilung des Rückstandes auf der
Membranfilteroberfläche bevorzugt für die Rückstands-
analyse eingesetzt.
Die Geräte mit PTFE-beschichtetem Lochblech
werden hauptsächlich für die Klar- oder Sterilfiltration
(Litervolumina) eingesetzt.
Inhaltsverzeichnis
4 |
Material: Borosilicatglas 3.3 (DIN-ISO 3585)
Klammer: Eloxiertes Aluminium
Filterunterstützung: a) Glassinterfritte im PTFE-Ring,
mit Zentrierrand oben und Silikon-O-Ring unten oder
b) PTFE-beschichtetes Lochblech auf einem Stützsieb
im PTFE-Ring, mit Zentrierrand oben und Silikon-
O-Ring unten.
Geräte Nr. 16306* 16307*
16315** 16316**
Silikon-O-Ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm
Filterdurchmesser 25 mm 50 mm
(oder 24) (oder 47)
Vorfilterdurchmesser 20 mm 40 mm
Filtrationsfläche 3 cm2 12,5 cm2
Fassungsvermögen 30 ml 250 ml
Auslaufstutzen:
Außendurchmesser 12 mm 15 mm
Betriebsdruck nur Unterdruck nur Unterdruck
Sterilisation Autoklavieren bis 134° C,
Trockenhitze bis 180° C
Die zu verwendenden Bedingun-
gen sind von dem eingesetzten
Membranfilter abhängig.
** mit Glasfritte
** mit PTFE-Lochblech
1. Technische Daten
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Entnehmen Sie das Gerät der Verpackung und
überprüfen Sie mit Hilfe der folgenden Liste die
Vollständigkeit der Lieferung:
Lieferumfang In Abb. 1
1 Deckel (nur 16307 und 16316) Nr. 1
1 Glasaufsatz Nr. 2
1 Klammer Nr. 3
1 Filterunterstützung mit Glasfritte
bzw. PTFE-Stützsieb u. PTFE-Lochblech Nr. 4
1 Silikon-O-Ring Nr. 5
1 Glasunterteil Nr. 6
2. Lieferumfang
Abb.1
6 |
Um eine lange Lebensdauer und Funktionstüchtig-
keit zu gewährleisten, ist es notwendig, das Gerät vor
dem ersten Gebrauch und nach jeder Benutzung zu
reinigen.
Gehen Sie so vor:
3.1 Zerlegen Sie das Gerät in seine Einzelteile (Abb.1).
3.2 Säubern Sie alle Teile mit warmen Wasser und
handelsüblichen Laborreinigungsmitteln (für Metall,
Glas, Kunststoff) und weichen Bürsten.
3.3 Spülen Sie die Teile mit heißen Wasser und danach
mit dest. Wasser ab.
3.4 Trocknen Sie die Teile im Preßluftstrom oder
an der Luft. Keine Verwendung von Tüchern,
wegen evtl. Faserabgabe.
4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes
und Einlegen des Membranfilters
Für den Aufbau eines Vakuumfiltrationsystems
benötigen Sie zusätzlich:
1 Stopfen (siehe Empfehlenswertes Zubehör)
1 Saugflasche (16672)
1 Vakuumquelle (z.B. 16612)
Vakuumschlauch (16623)
1 Woulff’sche Flasche (16610) bzw. 1 Vacusart
(17804-M)
1 Pinzette für die Handhabung der Membranfilter
(Abb. 2).
Falls Sie große Mengen an Routineuntersuchungen
durchführen wollen, empfehlen wir Ihnen unsere
3- oder 6-fache Absaugvorrichtung mit der
entsprechen den Anzahl an Filtrationsgeräten und
Verbindungs stücken (siehe Empfehlenswertes Zubehör).
3. Reinigen und Pflegen des
Filtrations gerätes
| 7
4.1 Versehen Sie das Glasunterteil mit dem entsprechen den
Stopfen und setzen Sie es auf die Saugflasche
(Abb. 3).
4.2 Stellen Sie mit Hilfe des Vakuumschlauchs die
Verbindung zwischen Saugflasche und Vakuumquelle
(z.B. eine Wasserstrahlpumpe) her (Abb. 4).
Wird als Vakuumquelle eine elektrische Pumpe
einge setzt, so muß zum Schutz vor überschäu-
mendem Filtrat zwischen Saugflasche und Pumpe eine
Woulff’sche Flasche (Abb. 5) oder ein Vacusart (17804-
M) eingesetzt werden. Beim Einbau des Vacusart ist
darauf zu achten, daß das übergetretene Filtrat in die
Saugflasche zurück laufen kann und nicht im Schlauch
stehenbleibt.
4.3 Versehen Sie die Filterunterstützung auf der Unterseite
mit dem Silikon-O-Ring und auf der Ober seite mit der
Glasfritte bzw. dem Stützsieb und dem PTFE-beschich-
teten Lochblech. Legen Sie zunächst das Stütz sieb mit
der glatten Seite nach oben ein und drücken Sie das
PTFE-Lochblech (der Außenrand zeigt nach unten)
paßgenau in die dafür vorgesehene Vertiefung.
Dann legen Sie die Filterunterstützung auf das Glas-
unterteil (Abb. 6).
4.4 Nehmen Sie das Membranfilter mit Hilfe einer Pinzette
aus der Verpackung und legen Sie es zentrisch auf die
Filterunterstützung.
Bei Verwendung eines Vorfilters legen Sie dieses dann
anschließend zentrisch auf das Membranfilter.
Der Durchmesser des Vorfilters darf die unter
»1. Technische Daten« angegebenen Maße nicht
überschreiten. (Abb.7)
4.5 Setzen Sie den Glasaufsatz paßgenau auf das
Unterteil und verschließen Sie beide Teile mittels
der Verschlußklammer (Abb. 8).
8 |
5.1 Zusammensetzen des Filtrationsgerätes und Einlegen
des Membranfilters wie unter 4. beschrieben.
5.2 Füllen Sie die zu filtrierende Flüssigkeit
in den Glasaufsatz (Abb. 9) und schalten Sie die
Vakuumpumpe ein.
Hinweis:
Wenn Sie für die Filtration zusätzlich ein Vorfilter ver-
wenden, empfehlen wir erst die Vakuumpumpe einzu-
schalten und dann die zu filtrierende Flüssigkeit in den
Glasaufsatz zu füllen (sonst könnte das Vorfilter nach
oben schwimmen).
5.3 Die Filtration ist beendet, wenn keine Flüssigkeit mehr
auf dem Membranfilter steht. Nehmen Sie das Vakuum
vom Gerät, indem Sie bei einer Wasserstrahl pumpe
einfach den Schlauch von der Olive der Saugflasche
abziehen (Abb.10).
Bei Arbeiten mit Woulff’scher Flasche und Vakuum-
pumpe, schalten Sie die Pumpe ab und entspannen die
Woulff’sche Flasche (Abb.11).
5.4 Nun können Sie das Filtrationsgerät mit Stopfen von
der Saugflasche nehmen und das Filtrat umfüllen oder
auch direkt in der Saugflasche belassen.
6. Sterilfiltration
(nur mit PTFE-beschichteten Lochblech als Filterunter-
stützung möglich, nicht mit Glasfritte)
6.1 Zusammensetzen des Gerätes und Einlegen des
Membranfilters wie unter 4. beschrieben, jedoch ohne
Anschluß an eine Vakuumquelle bzw. Woulff’sche
Flasche.
5. Klarfiltration
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Nylonfilter (Sartolon) sind grundsätzlich naß
einzulegen.
6.2 Versehen Sie die Olive der Saugflasche mit Hilfe eines
kurzen Vakuumschlauchs mit einem Vacusart (17804-
M) (Abb.12).
6.3 Verschließen Sie den Glasaufsatz mit dem Silikondeckel
und Watte oder mit Alu-Folie (Abb.13).
6.4 Das Gerät wird bei 121° C und 1 bar 30 Minu ten
autoklaviert (dies ist mit allen entsprechenden Sarto-
rius Stedim Biotech Membranfiltern durchzuführen,
ausgenom men Gelatine und Polyamid-Membranfilter).
Membranfilter aus Celluloseacetat 111.. und aus PTFE
118.. (ebenso die Glasfaserfilter 134..) können alter-
nativ im Filtrationsgerät mit Trockenhitze von 180° C
über
2 Stunden oder 160° C über 3 Stunden sterilisiert
werden (Filter trocken einlegen).
6.5 Nach dem Sterilisieren der Filtrationseinheit führen
Sie die Sterilfiltration wie eine Klarfiltration durch.
Beachten Sie sterile Bedingungen.
7. Mikrobiologische Untersuchungen
Für die mikrobiologische Untersuchung ist es erforder-
lich, das Filtrationsgerät mit eingelegtem
Filter zu sterilisieren (autoklavieren 121° C, 30 Minuten
oder Trockenhitze 180° C, 2 Std.). Anschließend führen
Sie die Filtration durch, entnehmen das Membranfilter
und inkubieren es auf entsprechenden Nährmedien.
8. Analytische Bestimmungen
Die Glasfiltrationsgeräte eignen sich in Verbindung
mit Membranfiltern sehr gut für z.B. gravimetrische
Bestimmungen, Partikeltests etc.
10 |
Filtrationsgerät Nr.
Artikelbezeichnung 16306* 16307*
16315** 16316**
Fluorelastomer-O-ring 00118 00124
Stopfen 17174 17175
Edelstahladapter mit Stopfen
für Edelstahlabsaug-
vorrichtung, 3fach und 6fach 16836 16837
Edelstahlabsaugvorrichtung,
3fach 16842 16842
Edelstahlabsaugvorrichtung,
6fach 16843 16843
Brutschrank 220 V, 50 Hz 18113
** mit Glasfritte als Filterunterstützung
** Mit PTFE-Lochblech als Filterunterstützung
Das weitere Zubehör ist für alle Geräte gleich:
16672 Saugflasche, 2 l
16623 Gummi-Vakuumschlauch, 1 m
16611 Wasserstrahlpumpe
mit G3/4 Innengewinde
16612 Laborvakuumpumpe, 220 V, 50 Hz
16692 Vakuumpumpe, 220 V, 50 Hz
16610 Woulff’sche Flasche
17804-M Vacusart
16625 Edelstahlpinzette
9. Empfehlenswertes Zubehör
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16306, 16315:
6980115 Glasaufsatz, 30 ml
6980116 Glasunterteil, 25 mm
6980117 Silikon-O-Ring, 25 + 3 mm
6983008 Verschlußklammer
17148 PTFE-Ring mit Glasfritte und
Silikon-O-Ring (für 16306)
17149 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem
Stützsieb und Lochblech sowie
Silikon-O-Ring (für 16315)
16306
16315
10. Ersatzteile
(siehe Zeichnung)
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16307, 16316:
6980119 Glasaufsatz, 250 ml
6980120 Glasunterteil, 50 mm
6980121 Deckel aus Silikonkautschuk
6980123 Silikon-O-Ring, 45 + 3 mm
6983006 Glasfritte
6983007 PTFE-Lochblech
6983009 Verschlußklammer
6983010 Stützsieb, PTFE-beschichtet
17146 PTFE-Ring mit Glasfritte und
Silikon-O-Ring (für 16307)
17147 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem
Stützsieb und Lochblech sowie
Silikon-O-Ring (für 16316)
16307
16316
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1. Specifications
2. Equipment Supplied
3. Cleaning and Care of the Filter Holder
4. How to Assemble the Filter Holder
5. Clarifying Filtration
6. Sterile Filtration
7. Microbiological Testing
8. Analytical Methods
9. Recommended Accessories
10. Spare Parts
Glass vacuum filter holders are available in two types
which differ only in the filter support, which is a PTFE
ring. This ring contains either a glass frit or a PTFE-
coated stainless steel screen and an underdrain screen.
The filter supports may only be changed as a unit.
Because of the particularly even distribution of parti-
culates of the membrane filter surface, filter supports
with glass frits are preferred for use in particulate
analysis.
Filter supports with a PTFE-coated screen are mainly
used for clarifying or sterile filtration of liter volumes.
Table of Contents
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Materials: Borosilicate glass (3.3 DIN-ISO 3585)
Clamp: Anodized aluminum
Filter support: a) Sintered glass frit in a PTFE ring,
with a centering rim on top and silicone O-ring on
the bottom, or b) PTFE-coated stainless steel screen on
an underdrain screen in a PTFE ring, with a centering
rim on top and a silicone O-ring on the bottom.
Filter Holder No. 16306* 16307*
16315** 16316**
Silicone O-ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm
Filter diameter 25 mm 50 mm
(or 24) (or 47)
Prefilter diameter 20 mm 40 mm
Filtration area 3 cm2 12.5 cm2
Capacity 30 ml 250 ml
Connections:
Outer diameter of outlet 12 mm 15 mm
Operating pressure vacuum only vacuum only
Sterilization: Autoclave up to 134°C maxi-
mum, or use dry heat up to
180°C maximum depending
on the membrane filter used.
** with a glass frit
** with a PTFE-coated stainless steel screen
1. Specifications
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Remove the filter holder from the packaging and check
the list below to make sure you have all the necessary
parts:
Equipment supplied Shown in
Fig.1 as:
1 Lid (16307 and 16316 only) No. 1
1 Glass funnel No. 2
1 Clamp No. 3
1 Filter support with glass frit or PTFE-
coated support screen and PTFE
underdrain screen No. 4
1 Silicone O-ring No. 5
1 Glass base No. 6
2. Equipment supplied
Fig.1
16 |
To ensure long service life and proper functioning of
the filter holder, it must be cleaned before the first use
and after every filtration run.
Proceed as follows:
3.1 Completely disassemble the filter holder
as indicated in the list of parts (see Fig.1).
3.2 Use a soft brush, warm water, and a gentle, commer-
cially available laboratory detergent (for metal, glass
and plastics) to clean all parts.
3.3 Rinse all parts first with hot water, then with distilled
water.
3.4 Dry the parts with compressed air, or let them dripdry.
Do not use towels or cloth as they may leave lint on
the filter holder.
4. How to Assemble the Filter Holder and
Insert the Membrane Filter
To assemble the vacuum filtration system, you will
need in addition:
1 Stopper (see “Recommended Accessories”)
1 Suction flask (16672)
1 Vacuum source (e.g., 16612 or 16615)
Vacuum hose (16623)
1 Woulff’s bottle (16610) or 1 Vacusart (17804-M)
Pair of forceps for handling the membrane filter
(see Fig. 2).
For large numbers of routine tests, we recommend our
3-place or 6-place vacuum manifold along with the
corresponding number of filter holders and connectors.
(See “Recommended Accessories.”)
3. Cleaning and Care of the Filter Holder
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4.1 Place the appropriate stopper on the glass base and
insert it into the suction flask (see Fig. 3).
4.2 Using a vacuum hose, connect the suction flask and
vacuum source, such as a water jet pump (see Fig. 4).
If an electric pump is used as a vacuum source,
a Woulff’s bottle (see Fig. 5) or a Vacusart (17804-M)
must be connected between the suction flask and
the pump in order to prevent the filtrate from foa-
ming over and entering the pump. When installing the
Vacusart (17804-M) , be sure that any filtrate overflow
can return to the suction flask, and will not be
entrapped in the hose.
4.3 Press-fit the silicone O-ring on the underside of the
filter support and place the glass frit or support screen
and underdrain screen on top. To do so, place the
underdrain screen with the smooth side up in the filter
support and press on the PTFE-coated support screen
with the outside edge facing down so that it fits exactly
into the indentation.Then put the filter support on the
glass base (see Fig. 6).
4.4 Using forceps, remove the membrane filter from the
packaging and center it on the filter support.
If you need to use a prefilter, center it on the membra-
ne filter at this point. The diameter of the prefilter may
not exceed the dimensions listed in the “Specifications”
(see Fig. 7).
4.5 Set the glass funnel on top of the base so that it fits
exactly and clamp the two parts together (see Fig. 8).
18 |
5.1 Assemble the filter holder and insert the membrane
filter as described in section 4.
5.2 Pour the liquid to be filtered into the glass
funnel (see Fig. 9) and switch on the vacuum pump.
Important Note:
If you are additionally using a prefilter, switch the va-
cuum pump on before filling the funnel with the liquid
to be filtered. (Otherwise, the prefilter may float to the
top of the liquid.)
5.3 Filtration is completed when all the liquid has passed
through the membrane filter. Disconnect the vacuum
source from the filter holder by pulling the hose off
the hose nipple on the suction flask (if the water jet
pump is used; see Fig.10). If a Woulff’s bottle and a
vacuum pump have been used, switch off the pump
and release vacuum via the Woulff’s bottle (see Fig.11).
5.4 Now remove the filter holder and stopper from the
suction flask and transfer the filtrate to another con-
tainer or leave it in the suction flask.
6. Sterile Filtration
(This is possible only with the filter support and
PTFE-coated screen, and not the glass filter support.)
6.1 Assemble the filter holder and insert the mem brane
filter as described in section 4; however, do not con-
nect the filter holder to a vacuum source or a Woulff’s
bottle.
5. Clarifying Filtration
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Important Note:
Wet cellulose nitrate filters before placing them in wet
filter holders. If the filter holder is dry, cellulose nitrate
filter must also be dry. Always make it a point to wet
cellulose acetate filters and nylon filters (Sartolon)
before placing them in a filter holder.
6.2 Use a short length of vacuum tubing to attach
a Vacusart (17804-M) to the nipple of the suction
bottle (see Fig.12).
6.3 Close the glass funnel with either the silicone
lid and a piece of cotton or with aluminum foil
(see Fig.13).
6.4 Autoclave the filter holder at 121°C and 1 bar
(14.5 psi) for 30 minutes. (This may be done with all
Sartorius Stedim Biotech membrane filters except for
gelatin and polyamide filters.)
Cellulose nitrate membrane filters (111..) and PTFE
membrane filters (118..) as well as glass fiber filters
(134..) may be sterilized by dry heat for either 2 hours
at 180°C or for 3 hours at 160°C.
(Do not wet the filters before placing them
in filter holders.)
6.5 After sterilizing the assembled filtration unit, proceed
with the filtration run as with clarifying filtration.
Be sure to maintain sterile conditions.
7. Microbiological Testing
For microbiological testing, it is necessary to sterilize
the filter holder containing the membrane filter.
Either autoclave the filter at 121°C for 30 min., or use
dry heat at 180°C for 2 hours. After sterilizing, perform
the filtration run, then remove the membrane filter and
incubate it on the required culture medium|media.
8. Analytical Methods
Sartorius Stedim Biotech Vacuum Filter Holders made
of glass are especially suited for analysis, e.g.,
gravimetric determinations, particulate analysis, etc.
20 |
Filter Holder No.
Product Name 16306* 16307*
16315** 16316**
Fluoroelastomer O-ring 00118 00124
Stopper 17174 17175
Stainless steel adapter
with stopper for
stainless steel 3-place
and 6-place manifold 16836 16837
Stainless steel
3-place manifold 16842 16842
Stainless steel
6-place manifold 16843 16843
Incubator 220 V, 50 Hz 18113
** with glass frit filter support
** with PTFE-coated screen for the filter support
These additional accessories can be used
with all filter holders:
16672 Suction flask, 2 l
16623 Rubber vacuum hose, 1m
16611 Water jet pump with G 3/4
female thread
16612 Laboratory vacuum pump,
220 V, 50 Hz
16615 Laboratory vacuum pump,
110 V, 60 Hz
16692 Vacuum pump, 220 V, 50 Hz
16695 Vacuum pump, 110 V, 60 Hz
17804-M Vacusart
16625 Stainless steel forceps
9. Recommended Accessories
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