2 VetMAX™ C. fetus Kit Notice d’Utilisation
La validation de l’extraction des acides nucléiques pour chaque échantillon s’effectue grâce à la détection d’un IPC endogène (Internal
Positive Control), présent dans chaque échantillon.
Un résultat IPC positif avec une valeur conforme dans un échantillon permet de valider l’extraction de cet échantillon qu’il soit positif
ou négatif pour le pathogène recherché : élimination des faux négatifs et vérification de l’effet des inhibiteurs.
Il est recommandé de réaliser deux contrôles négatifs pour valider le bon déroulement de l’analyse :
NCS : contrôle négatif d’extraction
C’est un témoin composé des réactifs utilisés lors de l’extraction, sans ajout d’échantillon (le volume d’échantillon peut être remplacé
par le tampon utilisé lors de la préparation des échantillons ou par de l’eau DNase/RNase-free), qui subit le même traitement que les
échantillons : extraction des acides nucléiques puis PCR temps réel.
Un résultat négatif en Campylobacter fetus et en IPC endogène permet de valider l’absence de contamination au cours de l’extraction et
de la PCR temps réel.
NC : contrôle négatif d’amplification
Il s’agit du mix d’amplification déposé dans la plaque au moment de la préparation de la PCR temps réel, complété de 5 µL d’eau
DNase/RNase-free pour ajuster la réaction à 25 µL.
Un résultat négatif pour Campylobacter fetus et IPC permet de valider l’absence de contamination au cours de la préparation des
réactions pour la PCR temps réel.
Matériel et réactifs requis pour la PCR temps réel non fournis dans le kit
Sauf indication contraire, tous les produits sont disponibles sur thermofisher.com.
• Micropipettes de précision (gamme de 1 µL à 1000 µL) avec pointes DNase/RNase-free à filtre
• Eau DNase/RNase-free
• Tampon TE 1X
• Tampon PBS 1X
• Un thermocycleur de PCR temps réel capable de détecter les fluorophores suivants :
– FAM™ (maximum d’émission : λ515 nm)
– VIC™ (maximum d’émission : λ554 nm)
• Consommables de qualité optique compatibles avec le thermocycleur utilisé :
– Plaques PCR 96 puits, barrettes PCR (8 ou 12 puits), microtubes ou capillaires
– Films ou bouchons adaptés à la fermeture
Procédure d’analyse
Le volume réactionnel de la PCR temps réel est de 25 µL :
• 3 - Mix C. fetus : 20 µL par analyse
• ADN extrait : 5 µL par analyse
Extraction des ADN bactériens
Il est nécessaire d’isoler les ADN à partir des échantillons pour l’analyse par PCR temps réel.
NOTE : Pour connaître des méthodes d’extractions compatibles et validées avec le VetMAX™ C. fetus Kit, merci de contacter le Support
Technique.
Préparation de la PCR temps réel
1. Créer un plan d’analyse pour la distribution des mix et échantillons. Éloigner si possible le contrôle positif (EPC) des autres
échantillons.
2. Décongeler le tube 3 - Mix C. fetus entre 2°C et 8°C, sur glace ou sur un portoir réfrigérant.
3. Homogénéiser le tube 3 - Mix C. fetus par agitation douce, puis centrifuger brièvement.
4. Distribuer 20 µL de 3 - Mix C. fetus par puits de la plaque PCR, barrette PCR ou capillaire utilisé.
5. Ajouter les ADN des échantillons et contrôles au mix réactionnel, selon le plan d’analyse prédéfini :
Composant Volume d’échantillon
ADN extraits de l’échantillon 5 µL
Contrôle positif d’amplification
4a - EPC C. fetus 5 µL
Contrôle négatif d’extraction (NCS)
NCS extrait 5 µL
Contrôle négatif d’amplification (NC)
Eau DNase/RNase-free 5 µL
6. Fermer la plaque PCR, les barrettes PCR ou les capillaires avec un film adhésif ou des bouchons adaptés.