Thermo Fisher Scientific VetMAX C. fetus Kit Mode d'emploi

Taper
Mode d'emploi
Réservé à l’usage vétérinaire. Usage in vitro exclusivement.
NOTICE D’UTILISATION
VetMAX C. fetus Kit
PCR temps réel TaqMan® pour la détection de Campylobacter fetus
Référence Catalogue CFP50
Partie Nº 100020352 Pub. MAN0008723 v. B.0
Technique Espèce(s) Acides nucléiques isolés à partir des matrices Test
PCR temps réel (ADN)
Duplex
IPC endogène
Bovins
Mucus vaginal et cervico-vaginal
Secrétions ou mucus du prépuce
Semences
Placenta
Avortons (liquide stomacal, foie, liquide poumon)
Individuel
AVERTISSEMENT ! Lire les fiches de données de sécurité (FDS) et suivre les consignes de manipulation. Porter des lunettes
de sécurité, des gants et des vêtements appropriés. Les fiches de données de sécurité (FDS) sont disponibles à l’adresse
thermofisher.com/support.
AVERTISSEMENT ! RISQUES BIOLOGIQUES POTENTIELS. Lire les informations de sécurité relatives aux risques biologiques
du produit disponibles sur thermofisher.com. Porter des lunettes de sécurité, des gants et des vêtements appropriés.
Informations sur le produit
Description du produit
Applied Biosystems VetMAX C. fetus Kit est un outil de diagnostic moléculaire permettant la détection par PCR temps réel de
Campylobacter fetus.
Chaque échantillon d’ADN obtenu après extraction est analysé en monocupule : la même cupule est utilisée pour la détection spécifique
de l’ADN bactérien de Campylobacter fetus et pour la détection d’un IPC (Internal Positive Control). La positivité de l’IPC traduit à la fois
l’efficacité de l’extraction et l’absence d’inhibiteur dans les échantillons.
Il est utilisable sur ADN bactériens extraits à partir de placenta, mucus vaginal et cervico-vaginal, de secrétions ou mucus du prépuce, de
semences, de placenta ou d’avortons (liquide stomacal, foie, liquide poumon).
Les protocoles complets d’extractions des ADN bactériens à partir de ces matrices sont disponibles sur demande au Support Technique.
Réactifs du kit et conservation
Le VetMAX C. fetus Kit se présente sous la forme d’un coffret contenant les différents réactifs pour la détection en duplex de
Campylobacter fetus et d’un contrôle interne IPC. À réception, le kit doit être conservé dans sa totalité entre 30°C et 10°C. Après
première utilisation d’un composant, le conserver selon les recommandations suivantes :
Article Description Volume
(50 réactions)
Conservation
A réception Après première
utilisation
3 - Mix C. fetus
(Tube vert)
Mix pour PCR TaqMan®. Contient :
Le système de détection pour la cible C. fetus, comprenant une sonde
TaqMan® marquée FAM - NFQ (Non-Fluorescent Quencher).
Le système de détection pour l’IPC, comprenant une sonde TaqMan®
marquée VIC - NFQ (Non-Fluorescent Quencher).
Le tampon et l’enzyme de PCR temps réel.
2 × 500 µL −30°C à −10°C −30°C à −10°C
4a - EPC C. fetus
(Tube marron)
External Positive Control :
Contrôle positif en C. fetus. Il s’agit d’acides nucléiques déjà extraits à
amplifier lors de la PCR temps réel.
90 µL −30°C à −10°C −30°C à −10°C
Témoins d’extraction et d’amplification
Le VetMAX C. fetus Kit contient 1 témoin permettant la validation de l’amplification des ADN bactériens :
4a - EPC C. fetus : contrôle positif en Campylobacter fetus
Contrôle positif déjà extrait à amplifier lors de la PCR temps réel.
Un résultat positif compris dans l’intervalle accepté de Ct permet de valider l’amplification de la cible Campylobacter fetus par PCR
temps réel.
2 VetMAX C. fetus Kit Notice d’Utilisation
La validation de l’extraction des acides nucléiques pour chaque échantillon s’effectue grâce à la détection d’un IPC endogène (Internal
Positive Control), présent dans chaque échantillon.
Un résultat IPC positif avec une valeur conforme dans un échantillon permet de valider l’extraction de cet échantillon qu’il soit positif
ou négatif pour le pathogène recherché : élimination des faux négatifs et vérification de l’effet des inhibiteurs.
Il est recommandé de réaliser deux contrôles négatifs pour valider le bon déroulement de l’analyse :
NCS : contrôle négatif d’extraction
C’est un témoin composé des réactifs utilisés lors de l’extraction, sans ajout d’échantillon (le volume d’échantillon peut être remplacé
par le tampon utilisé lors de la préparation des échantillons ou par de l’eau DNase/RNase-free), qui subit le même traitement que les
échantillons : extraction des acides nucléiques puis PCR temps réel.
Un résultat négatif en Campylobacter fetus et en IPC endogène permet de valider l’absence de contamination au cours de l’extraction et
de la PCR temps réel.
NC : contrôle négatif d’amplification
Il s’agit du mix d’amplification déposé dans la plaque au moment de la préparation de la PCR temps réel, complété de 5 µL d’eau
DNase/RNase-free pour ajuster la réaction à 25 µL.
Un résultat négatif pour Campylobacter fetus et IPC permet de valider l’absence de contamination au cours de la préparation des
réactions pour la PCR temps réel.
Matériel et réactifs requis pour la PCR temps réel non fournis dans le kit
Sauf indication contraire, tous les produits sont disponibles sur thermofisher.com.
Micropipettes de précision (gamme de 1 µL à 1000 µL) avec pointes DNase/RNase-free à filtre
Eau DNase/RNase-free
Tampon TE 1X
Tampon PBS 1X
Un thermocycleur de PCR temps réel capable de détecter les fluorophores suivants :
FAM (maximum d’émission : λ515 nm)
VIC (maximum d’émission : λ554 nm)
Consommables de qualité optique compatibles avec le thermocycleur utilisé :
Plaques PCR 96 puits, barrettes PCR (8 ou 12 puits), microtubes ou capillaires
Films ou bouchons adaptés à la fermeture
Procédure d’analyse
Le volume réactionnel de la PCR temps réel est de 25 µL :
3 - Mix C. fetus : 20 µL par analyse
ADN extrait : 5 µL par analyse
Extraction des ADN bactériens
Il est nécessaire d’isoler les ADN à partir des échantillons pour l’analyse par PCR temps réel.
NOTE : Pour connaître des méthodes d’extractions compatibles et validées avec le VetMAX C. fetus Kit, merci de contacter le Support
Technique.
Préparation de la PCR temps réel
1. Créer un plan d’analyse pour la distribution des mix et échantillons. Éloigner si possible le contrôle positif (EPC) des autres
échantillons.
2. Décongeler le tube 3 - Mix C. fetus entre 2°C et 8°C, sur glace ou sur un portoir réfrigérant.
3. Homogénéiser le tube 3 - Mix C. fetus par agitation douce, puis centrifuger brièvement.
4. Distribuer 20 µL de 3 - Mix C. fetus par puits de la plaque PCR, barrette PCR ou capillaire utilisé.
5. Ajouter les ADN des échantillons et contrôles au mix réactionnel, selon le plan d’analyse prédéfini :
Type d’analyse
Composant Volume d’échantillon
Echantillon pour analyse
ADN extraits de l’échantillon 5 µL
Contrôle positif d’amplification
4a - EPC C. fetus 5 µL
Contrôle négatif d’extraction (NCS)
NCS extrait 5 µL
Contrôle négatif d’amplification (NC)
Eau DNase/RNase-free 5 µL
6. Fermer la plaque PCR, les barrettes PCR ou les capillaires avec un film adhésif ou des bouchons adaptés.
VetMAX C. fetus Kit Notice d’Utilisation 3
Amplification par PCR en temps réel
1. Créer les détecteurs suivants sur le thermocycleur :
Reporter Quencher
CFP
FAM NFQ (Non-Fluorescent Quencher)
IPC CFP
VIC NFQ (Non-Fluorescent Quencher)
(1)
(1) Le fluorophore ROX est à renseigner obligatoirement pour l’analyse par PCR temps réel si le thermocycleur est capable de le détecter. Pour les autres
thermocycleurs, l’absence de détection de ce fluorophore ne remet pas en cause l’analyse par PCR temps réel.
2. Attribuer pour chaque échantillon le détecteur CFP et le détecteur IPC CFP dans le puits utilisé pour l’analyse.
3. Créer le programme de PCR temps réel suivant pour l’analyse :
Répétitions de l’étape Température Durée
Etape 1
×1 50°C 2 minutes
Etape 2
×1 95°C 10 minutes
Etape 3 ×45 95°C 15 secondes
60°C(1) 1 minute
(1) Collecte des données de fluorescence durant la phase 60°C – 1 minute.
4. Placer la plaque PCR, les barrettes PCR ou les capillaires dans le thermocycleur et démarrer la PCR temps réel.
Analyse des résultats
Analyse des données brutes
Se référer aux recommandations du fournisseur du thermocycleur pour l’analyse des données brutes.
1. Placer les lignes seuils (threshold) de manière indépendante pour chaque cible de la PCR temps réel.
2. Interpréter les résultats en fonction des valeurs de Ct obtenues pour les échantillons pour chaque détecteur selon les recommandations
ci-après.
Validation du test
La validation du test passe par l’acceptation des critères suivants :
Détecteur CFP Détecteur IPC CFP Validation
EPC C. fetus
Ct = Ct QC CFP de 4a - EPC C. fetus ± 3Ct(1) Ct < 45 ou Ct > 45(2) PCR validée
NCS
Ct > 45 Ct > 45 Extraction validée
NC
Ct > 45 Ct > 45 Réactifs PCR validés
(1) Se référer aux valeurs indiquées dans le paragraphe 2.1 « EPC » du Certificat d’Analyse du lot utilisé pour l’essai.
(2) Ne pas prendre en compte la valeur d’IPC dans l’EPC pour la validation du test.
Interprétation des résultats
Pour chaque échantillon analysé, interpréter les résultats comme décrit ci-dessous :
Détecteur CFP
Détecteur IPC CFP Interprétation
C
t
< 45
Ct < 45 ou Ct > 45 C. fetus détecté
C
t
> 45
Ct < 45 C. fetus non détecté
C
t
> 45
Ct > 45 Non validé(1)
(1) L’échantillon sera rendu comme non validé en raison de la négativité de l’IPC.
Conduite à tenir pour les échantillons non validés
1. Diluer l’ADN de l’échantillon non validé au 1:10 en tampon TE 1X.
2. Faire une nouvelle analyse PCR sur 5 µL de cette dilution.
3. Si l’ADN dilué est positif en C. fetus ou négatif en C. fetus avec un résultat IPC conforme, le résultat obtenu est alors validé.
4. Si l’ADN dilué est négatif en C. fetus avec un résultat IPC non conforme, le résultat obtenu est toujours non validé. Dans ce cas,
renouveler l’extraction de l’échantillon en le pré-diluant au 1:10 dans du tampon PBS 1X avant extraction.
5. Si le résultat est toujours non validé, répéter l’analyse sur un nouveau prélèvement.
thermofisher.com/support | thermofisher.com/askaquestion
thermofisher.com
29 juin 2017
Documentation et support
Service clientèle et assistance technique
Support technique : rendez-vous sur
thermofisher.com/askaquestion
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dernières nouveautés relatives aux services et à l'assistance
technique, notamment :
Numéros de téléphone partout dans le monde
Commande et Support web
Guides de l’utilisateur, manuels et protocoles
Certificats d’analyse
Fiches de Données de Sécurité (FDS, également
appelées FS (Fiches Signalétiques))
Remarque : Pour les FDS relatives aux réactifs et aux
produits chimiques d'autres fabricants, contacter
chaque fabricant.
Garantie produit limitée
Life Technologies Corporation et ses filiales garantissent leurs
produits selon les termes et conditions générales de ventes
disponibles sur le site www.thermofisher.com/us/en/home/
global/terms-and-conditions. Si vous avez des questions, vous
pouvez prendre contact avec Life Technologies à l'adresse web
suivante : thermofisher.com/support.
Laboratoire Service International (LSI) | 6 Allée des Écureuils | Parc Tertiaire du Bois Dieu | 69380 Lissieu, France
Les informations contenues dans ce guide sont susceptibles d’être modifiées sans préavis.
CLAUSE DE NON-RESPONSABILITÉ : DANS LA MESURE PERMISE PAR LA LOI, LIFE TECHNOLOGIES ET/OU SA OU SES FILIALE(S) NE SAURAIENT ÊTRE TENUES RESPON-
SABLES DE DOMMAGES SPÉCIAUX, ACCESSOIRES, INDIRECTS, PUNITIFS, MULTIPLES OU CONSÉCUTIFS LIÉS AU PRÉSENT DOCUMENT OU A SON USAGE OU EN RÉSULTANT.
Historique des révisions : Pub. MAN0008723 (français)
Révision
Date
Description
B.0
29 juin 2017
Mise à jour sur le modèle du document en cours, avec mises à jour associées à la garantie, aux marques et aux logos.
A.0
25 novembre 2013
Base de référence pour l’historique de révision
Licence à Usage Limité Nº 460 : Diagnostic vétérinaire PCR. Avis aux acheteurs : destiné à des services de diagnostic vétérinaire, notamment l’établissement de rapports de
diagnostic payants et pour les besoins de la recherche uniquement. Le diagnostic chez l’homme nécessite une licence séparée de Roche.
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TaqMan est une marque dé posée de Roche, utilisée sous autorisation et licence.
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